<!DOCTYPE HTML PUBLIC "-//W3C//DTD HTML 4.0 Transitional//EN">
<HTML xmlns="http://www.w3.org/TR/REC-html40" xmlns:v = 
"urn:schemas-microsoft-com:vml" xmlns:o = 
"urn:schemas-microsoft-com:office:office" xmlns:w = 
"urn:schemas-microsoft-com:office:word" xmlns:m = 
"http://schemas.microsoft.com/office/2004/12/omml"><HEAD>
<META http-equiv=Content-Type content="text/html; charset=us-ascii">
<META content="MSHTML 6.00.2900.6058" name=GENERATOR>
<STYLE>@font-face {
        font-family: Wingdings;
}
@font-face {
        font-family: Wingdings;
}
@font-face {
        font-family: Calibri;
}
@font-face {
        font-family: Consolas;
}
@page WordSection1 {size: 8.5in 11.0in; margin: 1.0in 1.0in 1.0in 1.0in; }
P.MsoNormal {
        FONT-SIZE: 11pt; MARGIN: 0in 0in 0pt; FONT-FAMILY: "Calibri","sans-serif"
}
LI.MsoNormal {
        FONT-SIZE: 11pt; MARGIN: 0in 0in 0pt; FONT-FAMILY: "Calibri","sans-serif"
}
DIV.MsoNormal {
        FONT-SIZE: 11pt; MARGIN: 0in 0in 0pt; FONT-FAMILY: "Calibri","sans-serif"
}
A:link {
        COLOR: blue; TEXT-DECORATION: underline; mso-style-priority: 99
}
SPAN.MsoHyperlink {
        COLOR: blue; TEXT-DECORATION: underline; mso-style-priority: 99
}
A:visited {
        COLOR: purple; TEXT-DECORATION: underline; mso-style-priority: 99
}
SPAN.MsoHyperlinkFollowed {
        COLOR: purple; TEXT-DECORATION: underline; mso-style-priority: 99
}
SPAN.EmailStyle17 {
        COLOR: windowtext; FONT-FAMILY: "Calibri","sans-serif"; mso-style-type: personal-compose
}
.MsoChpDefault {
        FONT-FAMILY: "Calibri","sans-serif"; mso-style-type: export-only
}
DIV.WordSection1 {
        page: WordSection1
}
</STYLE>
<!--[if gte mso 9]><xml>
<o:shapedefaults v:ext="edit" spidmax="1026" />
</xml><![endif]--><!--[if gte mso 9]><xml>
<o:shapelayout v:ext="edit">
<o:idmap v:ext="edit" data="1" />
</o:shapelayout></xml><![endif]--></HEAD>
<BODY lang=EN-US vLink=purple link=blue>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011>Hej Paul, </SPAN></FONT></DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011></SPAN></FONT> </DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011>looking at your data, there are several 
observations:</SPAN></FONT></DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011></SPAN></FONT> </DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011>- the meniscii from Abs and Int are not equal (ca. 5.97 
cm for Int and ca. 5.93 cm for Abs). You might want to compare the radial 
calibrations from Abs and Int by scanning the CB. If you can't get them to 
overlap yourself, ask your field technician to do it. Distorted radial 
calibrations will give distorted data, will give distorted fits, 
etc.</SPAN></FONT></DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011></SPAN></FONT> </DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011>- from the Int data, it looks as if you have at least 
three fractions present, two for the high s-region, one for the low s. The high 
s-range looks similar for Int and Abs (and your Abs-c(s) does indeed show two 
signals), so your Int c(s)-result seems too detailled for the amount of 
data/information in your sample. You might want to try a "simpler" approach like 
dc/dt or vHW.</SPAN></FONT></DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011></SPAN></FONT> </DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011>- it looks as if the high s-region in your Int data is 
completely separarated from your low s-region. You could therefore try to 
determine the concentration of material in that region simply by taking the 
signal amplitude of the first plateau and extrapolate that to wexp2t=0. The same 
procedure for Abs would give you a handle on the signal of detergent 
co-sedimenting. From my experience however, it's a good idea to perform 
independent measurements of the single compounds for such kind of 
calculations.</SPAN></FONT></DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011></SPAN></FONT> </DIV>
<DIV dir=ltr align=left><FONT face=Verdana color=#0000ff size=2><SPAN 
class=582043810-13042011>Best, Holger</SPAN></FONT></DIV><BR>
<DIV class=OutlookMessageHeader lang=en-us dir=ltr align=left>
<HR tabIndex=-1>
<FONT face=Tahoma size=2><B>From:</B> rasmb-bounces@rasmb.bbri.org 
[mailto:rasmb-bounces@rasmb.bbri.org] <B>On Behalf Of </B>Lake 
Paul<BR><B>Sent:</B> Tuesday, April 12, 2011 5:57 PM<BR><B>To:</B> 
rasmb@rasmb-email.bbri.org<BR><B>Subject:</B> [RASMB] Speed of Interference 
Optics vs. Absorbance Optics<BR></FONT><BR></DIV>
<DIV></DIV>
<DIV class=WordSection1>
<P class=MsoNormal>Folks,<o:p></o:p></P>
<P class=MsoNormal>I have a sample, a membrane protein with 0.01% DDM. I 
collected data at 45000 rpm, 4 min/scan. The sample is very heterogeneous but I 
am getting a decent peak from the absorbance data (280 nm) at 7.4 S, but the 
interference data gives me a peak at 6.5 S. I am trying to calculate the amount 
of detergent bound so I need to align the interference data with absorbance 
data. This is the first time in which I have gotten the peaks from the 
interference data not lining up with absorbance data. Is this due to the time it 
takes to make an absorbance scan relative to the interference scans? And/or I 
just spun the sample too hard? Or is the DDM affecting the sedimentation? See 
the attached powerpoint. <o:p></o:p></P>
<P class=MsoNormal>Yes, the slit assembly is functioning properly <SPAN 
style="FONT-FAMILY: Wingdings">J</SPAN>   <o:p></o:p></P>
<P class=MsoNormal>Any suggestions will be helpful! <o:p></o:p></P>
<P class=MsoNormal>Best,<o:p></o:p></P>
<P class=MsoNormal>Lake<o:p></o:p></P>
<P class=MsoNormal><o:p> </o:p></P>
<P class=MsoNormal>PS I collected data during the same run with the same sample 
except it had GFP attached. The interference peak shifted accordingly. The DDM 
peak lined up well also. <o:p></o:p></P>
<P class=MsoNormal><o:p> </o:p></P>
<P class=MsoNormal><B><I><SPAN 
style="FONT-SIZE: 10.5pt; FONT-FAMILY: Consolas">Lake N. Paul, 
PhD<o:p></o:p></SPAN></I></B></P>
<P class=MsoNormal><SPAN 
style="FONT-SIZE: 10.5pt; FONT-FAMILY: Consolas">Biophysics Research 
Specialist<o:p></o:p></SPAN></P>
<P class=MsoNormal><SPAN 
style="FONT-SIZE: 10.5pt; FONT-FAMILY: Consolas">Discovery Park - Bindley 
Biosciences Center Purdue University<o:p></o:p></SPAN></P>
<P class=MsoNormal><SPAN style="FONT-SIZE: 10.5pt; FONT-FAMILY: Consolas">1203 
West State Street<o:p></o:p></SPAN></P>
<P class=MsoNormal><SPAN style="FONT-SIZE: 10.5pt; FONT-FAMILY: Consolas">West 
Lafayette, Indiana, 47905<o:p></o:p></SPAN></P>
<P class=MsoNormal><SPAN 
style="FONT-SIZE: 10.5pt; FONT-FAMILY: Consolas">765.494.4960<o:p></o:p></SPAN></P>
<P class=MsoNormal><B><U><SPAN 
style="FONT-SIZE: 10.5pt; FONT-FAMILY: Consolas">BioAnalytical Lab 
Website:<o:p></o:p></SPAN></U></B></P>
<P class=MsoNormal><SPAN 
style="FONT-SIZE: 10.5pt; FONT-FAMILY: Consolas">http://www.purdue.edu/discoverypark/bioanalytical/<o:p></o:p></SPAN></P>
<P class=MsoNormal><o:p> </o:p></P></DIV></BODY></HTML>