<html dir="ltr"><head>
<meta http-equiv="Content-Type" content="text/html; charset=iso-8859-1">
<meta name="GENERATOR" content="MSHTML 8.00.6001.18975">
<style id="owaTempEditStyle"></style><style title="owaParaStyle"><!--P {
        MARGIN-TOP: 0px; MARGIN-BOTTOM: 0px
}
--></style>
</head>
<body style="MARGIN: 4px 4px 1px; FONT: 10pt Tahoma" ocsi="x">
<div style="FONT-FAMILY: Tahoma; DIRECTION: ltr; COLOR: #000000; FONT-SIZE: 13px">
<div><font size="2" face="Tahoma">An interacting system<a></a> should not run as a complex and free components unless there are slow kinetics or incompetent monomers.  If the affinity is low then you shouldn't see the fully associated complex.  You didn't mention
 the method but I presume its c(s) which can turn a trailing tail of a reaction boundary into multiple peaks.  Doesn't mean its free components.  To know any of this will confidence you must do a concentration series, changing ratios, and doing direct boundary
 fitting.</font></div>
<div><font size="2" face="Tahoma"><font face="tahoma"></font></font> </div>
<div><font size="2" face="Tahoma"><font face="tahoma">The ribosome story (I presume you mean 30s<a></a> + 50s<a></a> to 70s<a></a>) is complicated<a></a> by the presence of tight and loose couples, meaning a difference in Mg dependence with one fraction assembling
 at ~2 mM<a></a> Mg and another fraction at 12 mM<a></a> Mg.  This gives rise to three peaks at 30, 50 and 70s<a></a>.  The 30s<a></a> is a slower trailing<a></a> component that you might see with excess component, but most of the 30 and 50s<a></a> material
 is actually due to nonreacting<a></a> loose couples.  This is why I stress you must fit the reaction boundary data to a reversible and or kinetic model.</font></div>
</font>
<div dir="ltr"><font color="#000000" size="2" face="Tahoma"></font> </div>
<div style="DIRECTION: ltr" id="divRpF646213">
<hr tabindex="-1">
<font color="#000000" size="2" face="Tahoma"><b>From:</b> rasmb-bounces@rasmb.bbri.org [rasmb-bounces@rasmb.bbri.org] On Behalf Of Mark Agacan [M.Agacan@dundee.ac.uk]<br>
<b>Sent:</b> Tuesday, December 07, 2010 6:03 AM<br>
<b>To:</b> rasmb@rasmb.bbri.org<br>
<b>Subject:</b> [RASMB] dissociation of multiprotein complex in ultracentrifuge<br>
</font><br>
</div>
<div></div>
<div>
<div>Hello,</div>
<div> </div>
<div>Very often when I run a velocity experiment at 45 K rpm with a multiprotein complex, I see peaks with MW values corresponding to the complex, and also to many of the individual components of the complex.  I have read the RASMB archives on the issue of
 pressure-induced dissociation of sedimenting ribosomes.  Do other people find this is happening for multiprotein complexes, perhaps those that are very weakly associated? 
</div>
<div> </div>
<div>Best Regards,</div>
<div> </div>
<div>Mark</div>
<div> </div>
<div> </div>
<div>~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~<br>
Dr Mark Agacan, Scientific Officer for the Division of Biological Chemistry and Drug Discovery,<br>
Wellcome Trust Biocentre, College of Life Sciences, University of Dundee, Dundee, DD1 5EH
<br>
Tel: +44 1382 386095    Fax: +44 1382 345764    Mobile: 07525 451 117<br>
~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~</div>
<div> </div>
<div> </div>
<br>
<div>************************************************************<br>
<font color="#666666">Please consider the environment. Do you really need to print this email?
</font><br>
<br>
<br>
</div>
<br>
<p>The University of Dundee is a registered Scottish charity, No: SC015096 </p>
</div>
</div>
<br clear=all> Individuals who have received this information in error or are not authorized to receive it must promptly return or dispose of the information and notify the sender. Those individuals are hereby notified that they are strictly prohibited from reviewing, forwarding, printing, copying, distributing or using this information in any way.
</body>
</html>